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核酸探針標記的實驗過程
  • 發(fā)布日期:2016-03-09     信息來源:      瀏覽次數(shù):2966
    • 實驗原理

      分子生物研究中,zui常用的探針即為雙鏈DNA探針,它廣泛應(yīng)用于轉(zhuǎn)基因植物拷貝數(shù)的鑒定、臨床診斷等方面。雙鏈DNA探針的合成方法主要有下列兩種:切口平移法和隨機引物合成法。

      切口平移法(nick translation) 當(dāng)雙鏈DNA分子的一條鏈上產(chǎn)生切口時,E.coli DNA聚合酶Ⅰ就可將核苷酸連接到切口的3'羥基末端。同時該酶具有從5'→3'的核酸外切酶活性,能從切口的5'端除去核苷酸。由于在切去核苷酸的同時又在切口的3'端補上核苷酸,從而使切口沿著DNA鏈移動,用放射性核苷酸代替原先無放射性的核苷酸,將放射性同位素摻入到合成新鏈中。zui合適的切口平移片段一般為50-500個核苷酸。切口平移反應(yīng)受幾種因素的影響: (a) 產(chǎn)物的比活性取決于[α-32P]dNTP的比活性和模板中核苷酸被置換的程度。(b) DNA酶的用量和E.coli DNA聚合酶Ⅰ的質(zhì)量會影響產(chǎn)物片段的大小。(c) DNA模板中的抑制物如瓊脂糖會抑制酶的活性, 故應(yīng)使用仔細純化后的DNA。

       

      實驗試劑

      (1) 10×切口平移緩沖液:  0.5M/L Tris-Cl (pH7.2);  0.1M/L MgSO4; 10mM/L DTT;  100ug/ml BSA。

      (2) 未標記的dNTP原液:除同位素標記的脫氧三磷酸核苷酸外,其余3種分別溶解于50mM/L Tris·Cl (pH7.5)溶液中,濃度為0.3mM/L。

      (3) [α-32P] dCTP或[α-32P]dATP:400 Ci/mM, 10uCi/ul。

      (4)E.coli DNA聚合酶Ⅰ:(4單位/ul):溶于50ug/ml BSA, 1mM/L DTT, 50%甘油,50mM/L Tris·Cl(pH7.5)中。

      (5) DNA酶:1mg/ml。

      (6) EDTA :200mM/L (pH8.0)。

      (7) 10M/L NH4Ac。

       

      實驗步驟

      (1) 按下列配比混合:

      未標記的dNTP 10ul

      10×切口平移緩沖液 5ul

      待標記的DNA 1ug

      [α-32 P]dCTP或dATP(70uCi) 7ul

      E.coli DNA聚合酶 4單位

      DAN酶 I 1ul

      加水至終體積 50ul

      (2) 置于15℃水浴60分鐘。

      (3) 加入5ul EDTA終止反應(yīng)。

      (4) 反應(yīng)液中加入醋酸銨,使終濃度為0.5M/L, 加入兩倍體積預(yù)冷無水乙醇沉淀回收DNA探針。

       

      注意事項

      1、3H,32P及35S標記的dNTP都可使用于探針標記,但通常使用[α-32 P]-dNTP。

      2、DNA酶Ⅰ的活性不同,所得到的探針比活性也不同,DNA酶Ⅰ活性高,則所得探針比活性高,但長度比較短。

       

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